理化實驗室常見注意事項彙總！！！

1.上班前：

1。 開門注意通風，檢查門窗、空調裝置、其它電器裝置等是否正常。

2。 用水注意先把水龍頭的水擰開一段時間。

3。 看看今天是否要用烘箱，確定即開啟，注意升溫情況。

2.上班過程：

1。 烘箱、電爐、馬弗爐、高壓鍋等不用時需及時關掉，無人看守時也必須關掉。

2。 經常收拾桌面，清理用過的用具、玻璃儀器等。

3。 經常檢查試劑配製使用情況，是否有過期試劑、標準液等。

4。 對於架上試劑瓶經常拭擦以保持乾淨無灰塵。

5。 原始記錄必須是實驗過程中的實際資料，不能隨意塗改，如果對結果有懷疑，也不能劃去或撕毀，而在備註註明情況，重新做試驗並記錄，直到結果滿意。

6。 原始記錄是應統一表格，歸檔儲存，按每月整理收藏，（不常有的原始記錄酌情處理）。

7。 儀器用具分類擺放，用過的儀器用具即時清洗乾淨，自然晾乾（或烘乾），置於指定位置存放，以備後用（注意儘量不要用前匆匆忙忙清洗儀器用具）。

3.下班：

1。 確認未完成試驗樣品及儀器的安全性。

2。 關閉所有電源，培養箱、冰箱除外。

3。 確認關好水龍頭。

4。 確認關好所有門窗。

4.標準液標定注意事項

1。 各種基準物質烘乾的溫度要求並不一樣。

2。 烘乾過程，稱量瓶的蓋子應置於稱量瓶上，傾斜一定角度使半蓋狀態，不要把蓋另置於烘箱板上，這是為了防止有異物從烘箱頂部跌落到樣品中，也防止把烘箱板上的異物帶入樣品中。

3。 樣品應置於溫度計探頭附近。

4。 烘好後，把乾燥器移到烘箱邊，用夾子等圈住稱量瓶，以最短的時間把稱量瓶移入乾燥器中，蓋好乾燥器，半個小時內，小心移開乾燥器蓋少許，以放出部分熱空氣。

5。 樣品冷卻後則要稱量，不能待太長時間。

6。 稱量時始終一個原則，不要讓稱量瓶吸附到水氣、汙跡或其它異物，所以直接用手接觸稱量瓶、用藥匙取樣品、開著天平門稱量甚至呼吸氣吹到稱量瓶都是不正確的操作。

7。 正確的稱量操作應是減量法稱量，為什麼呢，因為減量法稱量，稱的是烘好的樣品，確保樣品大部分時間在天平的乾燥環境中。

8。 如果增量法稱量，則要確保器皿乾燥且外表也須乾淨，由於是在天平中操作，所以不能碰到器皿以引起天平讀數異常，所以操作起來會麻煩很多。

9。 稱量過程中，只能用稱量瓶蓋輕輕敲打稱量瓶邊緣，使藥品均勻落到待測器皿中，敲藥時間儘量的短，這要求較熟練的操作。

10。 儘可能的多稱幾個樣品，結果取最可能的數值，捨棄較大和較小的數值。

關鍵：烘乾、冷卻、稱量

5.還原糖測定注意事項：

1。 鹼性酒石酸甲、乙液與還原糖反應是定量關係，它們的多少直接影響測定結果的多少，從而影響檢測資料，所以鹼性酒石酸甲、乙液必須精確吸取，保證每次取樣量一致。

影響鹼性酒石酸甲、乙液吸取誤差的因素：

（1）鹼性酒石酸甲、乙液在吸管中刻度液麵的位置要保持一致。

（2）吸管外壁殘留的液體多少會造成鹼性酒石酸甲、乙液

取樣量的誤差，所以要習慣性的對吸管外壁的鹼性酒石酸甲、乙液進行相同處理，保證每次外壁殘留液相對一致，從而減少液體取樣量的誤差。

（3）鹼性酒石酸甲、乙液放入三角瓶的速度保持一致（不可吹），放完後要觀察其殘留在吸管中有多少，要保證每次殘留一致。

（4）鹼性酒石酸甲、乙液的不是很明顯的沉澱（或濃度變化）也會對測定造成波動，取鹼性酒石酸甲液的器具切記不要與鹼性物質接觸（同時也要注意防止帶入鹼性物質於甲液中），以避免甲液產生沉澱，盛甲液的容器時間長了，內壁上也會殘留固體（硫酸銅），這些固體顆粒也會造成檢測誤差。

2。 滴定速度要保持均衡一致，趁熱以每2秒一滴的速度滴定為好（速度不要受滴定時間的長短而改變）。

3。 試樣溶液滴定時要進行預測，正式測定時從滴定管滴加比預測體積少1mL的試樣溶液至錐形瓶中，控制在2min中內加熱至沸，保持沸騰以1滴/2s的速度滴定至終點。

4。 電爐的溫度對檢測結果也有影響，所以要保證電爐充分預熱，同時三角瓶在電爐上的放置位置要保持一致。

5。 測定時液體沸騰後的開始滴定的時間也要保持一致2min內，一般等液體充分沸騰後開始滴定。

6。 滴定終點的判斷也要保持一致。等液體藍色剛好褪去為為滴定終點。

7。 糖液稀釋及取樣也要注意精確，注意吸管正確使用方法。

8。 折光糖度精心檢測，依此資料輔導還原糖的檢測。

9。 注意輸液膠管漏液、變形，滴定管尖端氣泡等對檢測數值的影響。

10。 三角瓶使用後清洗乾淨。有時無法準確找到滴定終點就是由於三角瓶未清洗乾淨引起的。

關鍵：吸取鹼性酒石酸、甲乙液沸騰並維持沸騰2mins、整個滴定過程須控制在2mins內完成。

6.凱氏定氮蛋白質測定注意事項：

1。 原則上樣品越少，越容易消化，但樣品越少，計量的誤差可能性也越大，所以控制到蛋白質含量為0。10g左右，加入0。4g硫酸銅、6g硫酸鉀及20mL濃硫酸應是比較合理的消化方法。

2。 變色時因為是緩慢變色，所以可以兩種方法計時，一是完全變色後半小時即停止消化，二是剛變色後一個小時停止消化。

3。 消化液完全冷卻後才能加水、轉移、定容，這三個步驟都會導致發熱，所以必須確保水溶液最後在定容到刻度時冷卻到室溫，當然要多次洗滌凱氏燒瓶（即凱氏定氮瓶）以確保轉移完全。

4。 消化液最好不要放置過液，需要過夜測定時，請先轉移定容好消化液。定容好的消化液也不能放置時間太久（如幾天）才進行蒸餾滴定。

5。 蒸餾時，加樣液過程可以從容操作，但是加鹼後，必須緊密有序，鹼的流入過程應是充滿整個漏斗口的，在鹼還沒有放完時就應準備好加水以封住漏斗口，確保蒸發器中已有氨從漏斗口洩漏，而導致結果偏低。

6。 加入的氫氧化鈉溶液除與硫酸銨作用外，還與消化液中的硫酸和硫酸銅作用，若加入的氫氧化鈉不夠，則溶液呈藍色，不生成褐色的氫氧化銅沉澱。所以，加入的氫氧化鈉必須過量，並且動作還要迅速，以防止氨的流失。

7。 停止蒸餾時，由於反應室外層的壓力突然降低，可使液體倒吸入反應室外層，所以，操作時，應先將冷凝管下端提高液麵並清洗管口，再蒸一分鐘後關掉熱源。蒸餾是否完全，可用精密pH試紙測冷凝管口的冷凝液來測定，中性則說明已蒸餾完全。

關鍵：樣品稱量入凱氏燒瓶、加鹼

7.做蛋白質試驗化驗室的常見問題：

1。 沒有用長條紙稱量。

2。 不知道樣品精確度是多少，用何種天平稱量；

3。 直接從原試劑瓶中取藥稱量。

4。 凱氏燒瓶角度不對（應45-60度之間）。

5。 不固定凱氏燒瓶就進行消化，就是隨便掛上去，太危險。

6。 消化溫度不知如何控制，什麼時候該小火，小到多少，什麼時候該大火擔心不加石棉網會使凱氏燒瓶破裂。

7。 不知如何把握凱氏燒瓶以振搖消化液，也沒有準備厚手套。

8。 不知道過夜儲存的應是消化液而不是定容液（消化液定容後應及時蒸餾）。

9。 第二天發現定容液液麵低於刻度時又加水到刻度。

10。 標定基準物沒有烘到要求溫度。

11。 以為蒸餾要在通風櫥中進行。

12。 不知道定氮儀如何裝，如何清洗，總是拆下來人工清洗，結果洗不乾淨又打破了不少零件。

13。 不知如何正常使用定氮儀，對後面的操作如清洗、加鹼注意事項、蒸餾火力控制等無所適從。

14。 對結果沒有考慮到要計算幹基還是溼基。

15。 吸管吸樣品液後沒有用濾紙把沾在吸管外壁的樣液吸乾。

16。 用吸管去吸標準液加到滴定管中去。

17。 沒有取下滴定管自然垂直檢視刻度。

18。 用2000mL的大燒瓶作蒸發器而不作任何固定，危險重重，對用大三角瓶作為蒸發器覺得不可思議。

19。 對原始記錄管理不到位。

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